Влияние углеводородного загрязнения на сообщества грибов литоральных грунтов Белого и Баренцева морей

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Проведено исследование влияния углеводородного загрязнения на микобиоту грунтов литорали холодноводных Белого и Баренцева морей. Образцы отбирали в локациях, в разной степени загрязненных нефтепродуктами — от припортовых зон до относительно чистых территорий. Использование среды на дизельном топливе позволило практически во всех исследованных грунтах выявить грибы, способные к разложению углеводородов. Они представляют собой относительно малочисленную группу, в которой наиболее обильными были виды Penicillium chrysogenum и P. brevicompactum. В то же время сообщества грибов, выделяемые на среде, содержащей сахара, показывали большее разнообразие и численность, а наиболее распространёнными грибами здесь были Pseudogymnoascus pannorum, Penicillium chrysogenum и Acremonium fuci. Важнейшими факторами, влияющими на структуру сообществ грибов, были доля углеводородов от общей массы органического углерода в случае углеводородокисляющих, и локация — в случае сахароразрушающих. В эксперименте наибольшую активность показали представители видов Penicillium chrysogenum (снижение концентрации остаточных углеводородов на 77.4%), Cadophora fastigiata (72%) и Tolypocladium inflatum (67.2%).

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. Ю. Фадеев

Московский государственный университет им. М. В. Ломоносова

Email: katya.bubnova@wsbs-msu.ru
Россия, Москва

Л. А. Гавирова

Московский государственный университет им. М. В. Ломоносова

Email: katya.bubnova@wsbs-msu.ru
Россия, Москва

М. Л. Георгиева

Московский государственный университет им. М. В. Ломоносова; Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков им. Г. Ф. Гаузе

Email: katya.bubnova@wsbs-msu.ru
Россия, Москва; Москва

В. В. Козловский

Центр морских исследований Московского государственного университета им. М. В. Ломоносова

Email: katya.bubnova@wsbs-msu.ru
Россия, Москва

У. В. Симакова

Институт океанологии им. П. П. Ширшова РАН

Email: katya.bubnova@wsbs-msu.ru
Россия, Москва

А. И. Шестаков

Московский государственный университет им. М. В. Ломоносова

Email: katya.bubnova@wsbs-msu.ru
Россия, Москва

Е. Н. Бубнова

Московский государственный университет им. М. В. Ломоносова

Автор, ответственный за переписку.
Email: katya.bubnova@wsbs-msu.ru
Россия, Москва

Список литературы

  1. Андрианов В. В., Лебедев А. А., Неверова Н. В., Лукин Л. Р., Воробьева Т. Я., Собко Е. И., Кобелев Е. А., Лисицына Т. Ю., Самохина Л. А., Климов С. И. Долговременные последствия аварийного разлива нефтепродуктов в южной части Онежского залива Белого моря // Биология моря. 2016. Т. 42. № 3. С. 169‒178.
  2. Артемчук Н. Я. Микрофлора морей СССР. М.: Наука, 1981. 192 с.
  3. Бубнова Е. Н., Коновалова О. П. Разнообразие мицелиальных грибов в грунтах литорали и сублиторали Баренцева моря (окрестности поселка Дальние Зеленцы) // Микология и фитопатология. 2018. Т. 52. № 5. С. 319‒327.
  4. Исакова Е. А., Корнейкова М. В., Мязина В. А. Численность и видовое разнообразие культивируемых микроскопических грибов побережья Баренцева моря // Микология и фитопатология. 2023. Т. 57. № 4. С. 231‒246.
  5. Марфенина О. Е. Антропогенная экология почвенных грибов. М.: Медицина для всех, 2005. 196 с.
  6. Немировская И. А. Нефть в океане (загрязнение и природные потоки). М.: Научный мир, 2013. 432 с.
  7. Altschul S. F., Gish W., Miller W., Myers E. W., Lipman D. J. Basic local alignment search tool // J. Mol. Biol. 1990. V. 215. P. 403‒410.
  8. Barnes N. M., Khodse V. B., Lotlikar N. P., Meena R. M., Damare S. R. Bioremediation potential of hydrocarbon-utilizing fungi from select marine niches of India // 3Biotech. 2018. V. 8. P. 1‒10.
  9. Batista-García R. A., Kumar V. V., Ariste A., Tovar-Herrera O. E., Savary O., Peidro-Guzman H., Gonzales-Abradelo D., Jackson S. A., Dobson A. D. W., Sanches-Carbente M. D. R., Folch-Mallol J. L., Leduc R., Cabana H. Simple screening protocol for identification of potential mycoremediation tools for the elimination of polycyclic aromatic hydrocarbons and phenols from hyperalkalophile industrial effluents // J. Environ. Manage. 2017. V. 198. P. 1‒11.
  10. Benson D. A., Cavanaugh M., Clark K., Karsch-Mizrachi I., Lipman D. J., Ostell J., Sayers E. W. GenBank // Nucl. Acids Res. 2016. V. 44. Iss. D1. P. D67‒D72.
  11. Bik H. M., Halanych K. M., Sharma J., Thomas W. K. Dramatic shifts in benthic microbial eukaryote communities following the Deepwater Horizon oil spill // PloS One. 2012. V. 7. № 6. e38550.
  12. Bovio E., Gnavi G., Prigione V., Spina F., Denaro R., Yakimov M., Calogero R., Crisafi F., Varese G. C. The culturable mycobiota of a Mediterranean marine site after an oil spill: isolation, identification and potential application in bioremediation // Sci. Total Environ. 2017. V. 576. P. 310‒318.
  13. Bubnova E. N. Fungal diversity in bottom sediments of the Kara Sea // Botanica Marina. V. 53. P. 595‒600.
  14. Bubnova E. N., Grum-Grzhimailo O.A., Kozlovsky V. V. Composition and structure of the community of mycelial fungi in the bottom sediments of the White sea // Moscow University Biol. Sci. Bull. 2020. V. 75. № 3. P. 153‒158.
  15. Chaineau C. H., Morel J., Dupont J., Oudot J. Comparison of the fuel oil biodegradation potential of hydrocarbon-assimilating microorganisms isolated from a temperate agricultural soil // Sci. Total Environ. 1999. V. 227. № 2‒3. P. 237‒247.
  16. Clarke K. R., Warwick R. M. Change in marine communities: an approach to statistical analysis and interpretation. 2nd edn. Plymouth. UK: PRIMER-E, 2001. 172 p.
  17. Davies J. S., Westlake D. W.S. Crude oil utilization by fungi // Can. J. Microbiol. 1979. V. 25. P. 146‒156.
  18. Elshafie A., AlKindi A.Y., Al-Busaidi S., Bakheit C., Albahry S. N. Biodegradation of crude oil and n-alkanes by fungi isolated from Oman // Marine Pollut. Bull. 2007. V. 54. P. 1692‒1696.
  19. Jongman R. H.G., Ter Braak C. J.F., van Tongeren O. F.R. Data analysis in community and landscape ecology. Cambridge University Press, 1995. 324 p.
  20. Khusnullina A. I., Bilanenko E. N., Kurakov A. V. Microscopic fungi of White Sea sediments // Contemp. Probl. Ecol. 2018. V. 11. P. 503‒513.
  21. Luo Y., Luo Z. H., Pang K. L. Diversity and temperature adaptability of cultivable fungi in marine sediments from the Chukchi Sea // Bot. Marina. 2020. V. 63. P. 197‒207.
  22. Maamar A., Lucchesi M. E., Debaets S., van Long N. N., Quemener M., Cotton E., Bouderbala M., Burgaud G., Matallah-Boutiba A. Highlighting the crude oil bioremediation potential of marine fungi isolated from the Port of Oran (Algeria) // Diversity. 2020. V. 12. P. 196‒214.
  23. Magurran A. E. Ecological diversity and its measurement. Springer-Science and Business Media B. V., 1988. 192 p.
  24. Rämä T., Hassett B. T., Bubnova E. Arctic marine fungi: from filaments and flagella to operational taxonomic units and beyond // Bot. Marina. 2017. V. 60. Р. 433‒452.
  25. Sadaba R. B., Sarinas B. G.S. Fungal communities in bunker C oil-impacted sites off southern Guimaras, Philippines: a post-spill assessment of Solar 1 oil spill // Bot. Marina. 2010. V. 53. P. 565‒575.
  26. Simister R. L., Poutasse C. M., Thurston A. M., Reeve J. L., Baker M. C., White H. K. Degradation of oil by fungi isolated from Gulf of Mexico beaches // Mar. Pollut. Bull. 2015. V. 100. P. 327‒333.
  27. Velez P., Gasca-Pineda J., Riquelme M. Cultivable fungi from deep-sea oil reserves in the Gulf of Mexico: Genetic signatures in response to hydrocarbons // Mar. Environ. Res. 2020. V. 153. P. 104816.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Диаграмма многомерного шкалирования (nMDS) для объединенных сообществ грибов по признаку общего антропогенного воздействия (фактор “Антропоген”). WS — образцы с побережья Белого, BS — с побережья Баренцева моря

Скачать (210KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Убыль остаточных углеводородов при росте исследованных изолятов грибов

Скачать (255KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024