Сохранение уязвимого вида Oxytropis chankaensis (Fabaceae) в культуре in vitro

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Впервые разработан протокол микроклонального размножения Оxytropis chankaensis Jurtz. – редкого эндемика Приморского края. В качестве первичных эксплантов использованы семена второго года хранения. Всхожесть семян составила 36%, жизнеспособность – 75%. Культивирование проводилось на среде Мурасиге и Скуга. Выявлено влияние четырех регуляторов роста (6-бензиламинопурина, тидиазурона, 1-нафтилуксусной кислоты и индолил-3-масляной кислоты) в концентрациях от 0.5 до 2 мг/л, а также их сочетаний на коэффициент размножения и укоренение микроклонов в условиях in vitro. Показано положительное влияние 0.5 мг/л тидиазурона и 2 мг/л индолил-3-масляной кислоты на увеличение числа побегов исследуемого вида. Коэффициент размножения на средах с вышеуказанными регуляторами роста составил 6 и 7 соответственно. Одновременное внесение двух регуляторов роста в питательную среду приводит к образованию каллусной ткани, которая в дальнейшем витрифицируется. Образование корней отмечается на средах Мурасиге–Скуга, дополненных 1 мг/л индолил-3-масляной кислоты или 0.5 мг/л 1-нафтилуксусной кислоты.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. С. Пьянова

Ботанический сад-институт ДВО РАН

Email: k.berdasova@mail.ru
Россия, г. Владивосток

К. С. Бердасова

Ботанический сад-институт ДВО РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: k.berdasova@mail.ru
Россия, г. Владивосток

Р. В. Дудкин

Ботанический сад-институт ДВО РАН

Email: k.berdasova@mail.ru
Россия, г. Владивосток

Ю. Е. Сабуцкий

Ботанический сад-институт ДВО РАН

Email: k.berdasova@mail.ru
Россия, г. Владивосток

Список литературы

  1. Артюкова В. Е., Козыренко М. М. 2012. Филогенетические отношения Oxytropis chankaensis Jurtz. и Oxytropis oxyphylla (Pall.) DC. (Fabaceae) по данным секвенирования ITS рибосомного оперона ядерной ДНК и межгенных спейсеров хлоропластного генома. — Генетика. 48(2): 186–193. https://elibrary.ru/oowiht
  2. Воронкова Н. М., Холина А. Б. 2010. Сохранение эндемичных видов Дальнего Востока России с помощью глубокого замораживания семян. — Известия РАН. Серия биологическая. 5: 581–586. https://elibrary.ru/mvntdl
  3. Воронкова Н. М., Холина А. Б. 2017. Биология прорастания и хранение семян эндемичных видов рода остролодка (Oxytropis DC., семейство Fabaceae) Сибири и Дальнего Востока России. — Вестник ДВО РАН. 2: 23–30. https://elibrary.ru/zizpkb
  4. Малышев Л. И. 2008. Разнообразие рода остролодка (Oxytropis) в Азиатской России. — Turczaninowia. 11(3): 5–141. https://elibrary.ru/jvhfqv
  5. Павлова Н. С. 1989. Oxytropis DC. — В кн.: Сосудистые растения советского Дальнего Востока. Л. Т. 4. С. 236–280.
  6. Павлова Н. С. 2008. Остролодочник ханкайский – Oxytropis chankaensis (Jurtz.). — В кн.: Красная книга Приморского края: Растения. Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды растений и грибов. Владивосток. С. 136–137. https://redbookpk.ru/index_plants.html
  7. Павлова Н. С., Уланова К. П. 1971. К химическому исследованию дальневосточных видов рода Oxytropis DC. — В сб.: Тез. конф. Биологически активные вещества флоры и фауны Дальнего Востока и Тихого океана. Владивосток. С. 19.
  8. Юрьева О. В., Гамбург К. З., Казановский С. Г. 2008. Клональное микроразмножение Oxytropis triphylla (Fabaceae). — Раст. ресурсы. 44(3): 36–40. https://elibrary.ru/julbcv
  9. Шретер А. И. 1975. Остролодочник ханкайский – Oxytropis hailarensis Kitag. f. chankaensis (Jurtz.) Kitag. [О. oxyphylla (Pall.) DC., S.L.]. — В кн. Лекарственная флора советского Дальнего Востока. М. С. 163.
  10. Бердасова К. С., Пьянова А. С., Каменева Л. А. 2023. Влияние абиотических факторов на всхожесть in vitro семян Oxytropis chankaensis Jurtz., редкого эндемичного вида Дальнего Востока России. — Botanica Pacifica. 12(2): 168–171. https://doi.org/10.17581/bp.2023.12206 (на англ.)
  11. Burlakova L. E., Karatayev A. Y., Karatayev V. A., May M. E., Bennett D. L., Cook M. J. 2011. Endemic species: Contribution to community uniqueness, effect of habitat alteration, and conservation priorities. — Biological Conservation. 144(1): 155–165. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2010.08.010
  12. Deepa A. V., Thomas T. D. 2020. In vitro strategies for the conservation of Indian medicinal climbers. — In Vitro Cell. Dev. Biol. — Plant. 56(6): 784–802. https://doi.org/10.1007/s11627-020-10084-x
  13. Guo B., Abbasi B. H., Zeb A., Xu L. L., Wei Y. H. 2011. Thidiazuron: a multi-dimensional plant growth regulator. — Afr. J. Biotechnol. 10: 8984–9000. https://doi.org/10.5897/AJB11.636
  14. Guo B., Stiles A. R., Liu C. Z. 2012. Thidiazuron enhances shoot organogenesis from leaf explants of Saussurea involucrate Kar. et Kir. — In Vitro Cell. Dev. Biol. — Plant. 48(6): 609–612. https://doi.org/10.1007/s11627-012-9468-6
  15. He W., Guo B., Fan P., Guo L., Wei Ya. 2015. In vitro propagation of a poisonous plant Oxytropis glabra (Lam.) DC. — Plant Cell. Tiss. Organ. Cult. 120(1): 49–55. https://doi.org/10.1007/s11240-014-0577-2
  16. Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. — Physiol. Plant. 15(3): 473–497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Размножение Oxytropis chankaensis в культуре in vitro: a – на среде МС без регуляторов роста, b – МС + 0.5 мг/л 6-БАП; c – МС + 0.5 мг/л ТДЗ; d – МС + 0.5 мг/л НУК.

Скачать (148KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2025