Hydrostatic pressure and cryofluidics pretreatment effect on seed germination and lettuce plant development

Capa

Citar

Texto integral

Acesso aberto Acesso aberto
Acesso é fechado Acesso está concedido
Acesso é fechado Somente assinantes

Resumo

It has been shown that treatment with hydrostatic pressure of 10 MPa for 5 min stimulates accelerated germination of lettuce seeds. Treatment with liquid oxygen has a depressing effect on the seeds. In this case, treatment in liquid argon, on the contrary, stimulates seed germination. The time delay between seed treatment and the start of germination can have a negative impact on plant development.

Texto integral

Acesso é fechado

Sobre autores

N. Kruglikov

Mikheev Institute of Metal Physics of the Ural Branch of the Russian Academy of Sciences; Ural Federal University

Autor responsável pela correspondência
Email: nick@imp.uran.ru
Rússia, Yekaterinburg; Yekaterinburg

A. Bystrushkin

All-Russian Scientific Research Institute of Medicinal and Aromatic Plants

Email: nick@imp.uran.ru
Rússia, Moscow

I. Kochev

Mikheev Institute of Metal Physics of the Ural Branch of the Russian Academy of Sciences

Email: nick@imp.uran.ru
Rússia, Yekaterinburg

S. Protsiv

Mikheev Institute of Metal Physics of the Ural Branch of the Russian Academy of Sciences; Ural Federal University

Email: nick@imp.uran.ru
Rússia, Yekaterinburg; Yekaterinburg

D. Krylova

Mikheev Institute of Metal Physics of the Ural Branch of the Russian Academy of Sciences; Ural Federal University

Email: nick@imp.uran.ru
Rússia, Yekaterinburg; Yekaterinburg

Bibliografia

  1. Rifna E.J., Ratish Ramanan K., Mahendran R. // Trends Food Sci. Technol. 2019. V. 86. P. 95.
  2. Лебедев В.М., Платова Н.Г., Спасский А.В. и др. // Изв. РАН. Сер. физ. 2020. Т. 84. № 4. С. 487; Lebedev V.M., Platova N.G., Spassky A.V. et al. // Bull. Russ. Acad. Sci. Phys. 2020. V. 84. No. 4. P. 373.
  3. Кругликов Н.А., Беляев А.Ю., Минин М.Г., Яковлев Г.А. // Изв. РАН. Сер. физ., 2023. Т. 87. № 11. С. 1593; Kruglikov N.A., Belyaev A.Yu., Minin M.G., Yakovlev G.A. // Bull. Russ. Acad. Sci. Phys. 2023. V. 87. No. 11. P. 1625.
  4. Молодкин В.Ю. // Научн.-технн. бюлл. пробл. семеноведения. ВНИИ растениеводства им. Н.И. Вавилова. 1985. Т. 152. C. 60.
  5. Кругликов Н.А., Быструшкин А.Г., Беляев А.Ю. // Изв. РАН. Сер. физ. 2022. Т. 86. № 2. С. 228; Kruglikov N.A., Bystrushkin A.G., Belyaev A.Yu. // Bull. Russ. Acad. Sci. Phys. 2022. V. 86. No. 2. P. 170.
  6. Швачко Н.А., Хлесткина Е.К. // Вавиловский журн. генетики и селекции. 2020. Т. 24. № 5. С. 451.
  7. Кретович Л.К. // Биохимия растений. М.: Высшая школа, 1980. 445 с.
  8. Шарова Е.И. // Антиоксиданты растений. СПб: Изд-во СПб. ун-та, 2016.
  9. Nagel M., Richter J., Börner A. et al. // Free Radical Research. 2019. V. 53. No. 6. P. 641.
  10. Shimizu A., Kumakura J. // Amer. J. Plant Sci. 2011. V. 2. P. 438.
  11. Крисс А.Е. Жизненные процессы и гидростатическое давление. М: Наука, 1973. 272 с.
  12. Кругликов Н.А., Быструшкин А.Г., Леспух И.Н., Кругликова Л.Н. // Зеленый журнал – Бюлл. бот. сада ТГУ. 2018. № 5. С. 14.
  13. Аfsharypuor S., Ranjbar M., Mazaheri M. et al. // Res. J. Pharmacogn. 2018. V. 5. No.3. P. 1.
  14. Титов В.Н., Дыгай А.М., Котловский М.Ю. и др. // Бюлл. сибир. медицины. 2014. Т. 13. № 5. С. 149.
  15. Pecherskaya М., Mamatkulov Sh., Ruzimuradov O., Butanov K. // Chem. Chem. Eng. 2020. No. 3. Art. No. 12.
  16. Магомедова З.М. // Изв. ДГПУ. Естеств. и точные науки. 2021. Т. 15. № 2. С. 9.
  17. Schwember A.R., Bradford K.J. // J. Exp. Botany. 2010. V. 61. No. 15. P. 4423.
  18. Кругликов Н.А., Кочев И.В., Беляев А.Ю., Соколов А.Л. // Тез. докладов XXIII Всеросс. школы-семинара по проблемам физики конденсированного состояния вещества. Екатеринбург, 2023. С. 238.
  19. Николаева М.Г., Разумова М.В., Гладкова В.Н. Справочник по проращиванию покоящихся семян. Л.: Наука, 1985. 348 с.
  20. Международные правила анализа семян. М.: Колос, 1984. 310 с.
  21. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. 352 с.
  22. Лутова Л.А., Проворов Н.А., Тиходеев О.Н. и др. Генетика развития растений. СПб: Наука, 2000. 539 с.

Arquivos suplementares

Arquivos suplementares
Ação
1. JATS XML
Baixar
2. Fig. 1. Laboratory germination of lettuce seeds after barotreatment (II) during germination in the dark, sample – 100 pcs. The pressure level of 0 MPa corresponds to the control group of each treatment option.

Baixar (15KB)
Metadados
3. Fig. 2. Average length of lettuce sprouts during germination in the dark after barotreatment (II), sample – 100 pcs. The error in length measurement is 0.5 mm. The pressure level of 0 MPa corresponds to the control group of each treatment option.

Baixar (14KB)
Metadados
4. Fig. 3. Average length of lettuce sprouts, roots and hypocotyls during germination in the dark (sample – 100 pcs.) after treatment with cryogenic liquids (III). The horizontal axis indicates the treatment. The error in length measurement is 0.5 mm. (c.g. – control group, l.argon – liquid argon, l.c. – liquid oxygen).

Baixar (15KB)
Metadados
5. Fig. 4. Germination of lettuce seeds after treatment with cryogenic liquids (III), sample of 100 pcs. (c.g. – control group, l.a. – liquid argon, l.c. – liquid oxygen).

Baixar (17KB)
Metadados

Declaração de direitos autorais © Russian Academy of Sciences, 2024